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Analyse asymmetrischer Zellteilungen in Drosophila

Analysis of asymmetric cell division in Drosophila

Jürgen A. Knoblich (ORCID: 0000-0002-6751-3404)
  • Grant-DOI 10.55776/P16629
  • Förderprogramm Einzelprojekte
  • Status beendet
  • Projektbeginn 01.01.2004
  • Projektende 31.12.2007
  • Bewilligungssumme 367.778 €

Wissenschaftsdisziplinen

Biologie (100%)

Keywords

    Cell polarity, Mitosis, Asymmetric cell division, Nervous system, Drosophila, Stem cell

Abstract Endbericht

Alle lebenden Organismen entwickeln sich aus einzelnen Zellen. Viele verschiedene Zelltypen müssen während dieses Entwicklungsprozesses erzeugt werden. Um diese Vielzahl an unterschiedlichen Zellen zu generieren, können sich einige Zellen asymmetrisch in zwei unterschiedliche Tochterzellen teilen. Sie erreichen dies, indem sie bestimmte Proteine in eine der beiden Tochterzellen segregieren, die dann ein bestimmtes Zellschicksal in dieser, aber nicht in der Schwesterzelle, auslösen. Die hier beschriebenen Experimente zielen auf ein Verständnis dieser asymmetrischen Proteinsegregation ab. Wir werden die Fruchtfliege Drosophila melanogaster als Modellsystem verwenden. Im Drosophila Nervensystem segregiert das Protein Numb asymmetrisch während der Mitose. Wir wissen, dass die asymmetrische Segregation von Numb von einem Proteinkomplex, dem sogenannten Par-Komplex, abhängt. Dieser Komplex akkumuliert auf einer Seite und dirigiert Numb über einen noch unbekannten Mechanismus an die gegenüberliegende Seite der Zelle. Wir konnten zeigen, dass die Par-Proteins ein anderes Protein, genannt Lgl, phosphorylieren und dadurch inaktivieren. Unser Modell ist, dass Lgl gebraucht wird für die Lokalisation mehrerer proteine an den Zell Kortex. Nachdem es auf einer Seite inhibiert ist, sind diese Proteine von dieser Seite ausgeschlossen und akkumulieren auf der gegenüberliegenden Seite des Zellkortex. Mit den hier beschriebenen Experimenten versuchen wir zu verstehen, wie Lgl andere proteine an den Zellkortex dirigiert. Dazu werden wir lgl Bindungspartner über Immunpräzipitation und Massenspektroskopie identifizieren und sie mit den in Drosophile verfügbaren genetischen und zellbiologischen Methoden analysieren. Wir werden ferner Methoden entwickeln, die uns erlauben zu analysieren, wo in einer Zelle Lgl mit diesen Bindungspartnern interagiert. Ferner werden wir versuchen, Proteine in nur einer bestimmten region einer zelle zu inaktivieren um zu definieren, wo in der Zelle diese Proteine gebraucht werden. Diese Experimente sollen uns helfen, den Mechanismus der asymmetrischen Lokalisation und Segregation von Numb zu verstehen. Nachdem Numb im Menschen konserviert ist und kürzliche Experimente zeigten dass sein Maus Homologes für die Regulation des Pools neuronaler Stammzellen verantwortlich ist,. erwarten wir dass unsere Experimente von grosser medizinischer Relevanz sind, vor allem für potenzielle Ansätze der Stammzelltherapie.

Alle lebenden Organismen entwickeln sich aus einzelnen Zellen. Viele verschiedene Zelltypen müssen während dieses Entwicklungsprozesses erzeugt werden. Um diese Vielzahl an unterschiedlichen Zellen zu generieren, können sich einige Zellen asymmetrisch in zwei unterschiedliche Tochterzellen teilen. Sie erreichen dies, indem sie bestimmte Proteine in eine der beiden Tochterzellen segregieren, die dann ein bestimmtes Zellschicksal in dieser, aber nicht in der Schwesterzelle, auslösen. Die hier beschriebenen Experimente zielen auf ein Verständnis dieser asymmetrischen Proteinsegregation ab. Wir werden die Fruchtfliege Drosophila melanogaster als Modellsystem verwenden. Im Drosophila Nervensystem segregiert das Protein Numb asymmetrisch während der Mitose. Wir wissen, dass die asymmetrische Segregation von Numb von einem Proteinkomplex, dem sogenannten Par-Komplex, abhängt. Dieser Komplex akkumuliert auf einer Seite und dirigiert Numb über einen noch unbekannten Mechanismus an die gegenüberliegende Seite der Zelle. Wir konnten zeigen, dass die Par-Proteins ein anderes Protein, genannt Lgl, phosphorylieren und dadurch inaktivieren. Unser Modell ist, dass Lgl gebraucht wird für die Lokalisation mehrerer proteine an den Zell Kortex. Nachdem es auf einer Seite inhibiert ist, sind diese Proteine von dieser Seite ausgeschlossen und akkumulieren auf der gegenüberliegenden Seite des Zellkortex. Mit den hier beschriebenen Experimenten versuchen wir zu verstehen, wie Lgl andere proteine an den Zellkortex dirigiert. Dazu werden wir lgl Bindungspartner über Immunpräzipitation und Massenspektroskopie identifizieren und sie mit den in Drosophile verfügbaren genetischen und zellbiologischen Methoden analysieren. Wir werden ferner Methoden entwickeln, die uns erlauben zu analysieren, wo in einer Zelle Lgl mit diesen Bindungspartnern interagiert. Ferner werden wir versuchen, Proteine in nur einer bestimmten region einer zelle zu inaktivieren um zu definieren, wo in der Zelle diese Proteine gebraucht werden. Diese Experimente sollen uns helfen, den Mechanismus der asymmetrischen Lokalisation und Segregation von Numb zu verstehen. Nachdem Numb im Menschen konserviert ist und kürzliche Experimente zeigten dass sein Maus Homologes für die Regulation des Pools neuronaler Stammzellen verantwortlich ist,. erwarten wir dass unsere Experimente von grosser medizinischer Relevanz sind, vor allem für potenzielle Ansätze der Stammzelltherapie.

Forschungsstätte(n)
  • Institut für Molekulare Pathologie - IMP - 100%

Research Output

  • 1269 Zitationen
  • 5 Publikationen
Publikationen
  • 2013
    Titel FACS purification of Drosophila larval neuroblasts for next-generation sequencing
    DOI 10.1038/nprot.2013.062
    Typ Journal Article
    Autor Harzer H
    Journal Nature Protocols
    Seiten 1088-1099
    Link Publikation
  • 2009
    Titel Genome-wide analysis of Notch signalling in Drosophila by transgenic RNAi
    DOI 10.1038/nature07936
    Typ Journal Article
    Autor Mummery-Widmer J
    Journal Nature
    Seiten 987-992
    Link Publikation
  • 2009
    Titel The TRIM-NHL Protein TRIM32 Activates MicroRNAs and Prevents Self-Renewal in Mouse Neural Progenitors
    DOI 10.1016/j.cell.2008.12.024
    Typ Journal Article
    Autor Schwamborn J
    Journal Cell
    Seiten 913-925
    Link Publikation
  • 2008
    Titel Mei-P26 regulates microRNAs and cell growth in the Drosophila ovarian stem cell lineage
    DOI 10.1038/nature07014
    Typ Journal Article
    Autor Neumüller R
    Journal Nature
    Seiten 241-245
    Link Publikation
  • 2008
    Titel Linking Cell Cycle to Asymmetric Division: Aurora-A Phosphorylates the Par Complex to Regulate Numb Localization
    DOI 10.1016/j.cell.2008.07.049
    Typ Journal Article
    Autor Wirtz-Peitz F
    Journal Cell
    Seiten 161-173
    Link Publikation

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