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Photo-vernetzte Proteinkomplexe in lebenden C.elegans

In vivo photo-crosslinked protein assemblies in C.elegans

Fränze Müller (ORCID: 0000-0003-3764-3547)
  • Grant-DOI 10.55776/ESP566
  • Förderprogramm ESPRIT
  • Status laufend
  • Projektbeginn 01.01.2024
  • Projektende 31.12.2026
  • Bewilligungssumme 333.037 €
  • Projekt-Website

Wissenschaftsdisziplinen

Biologie (100%)

Keywords

    Crosslinking Mass Spectromatry, Proteomics, C.elegans, Meiosis, Photo-Amino Acids, Structural Biology

Abstract

Der Caenorhabditis elegans Wurm, ein mehrzelliger eukaryotischer Organismus, bietet eine einzigartige Gelegenheit für tiefgreifende Untersuchungen molekularer Mechanismen, die DNA- Reparatur, Replikation, Stoffwechsel- oder seltene genetische Erkrankungen steuern. Dank der Transparenz von C. elegans ist die Erforschung der Zelldifferenzierung und anderer Entwicklungsprozesse im intakten Organismus erleichtert. Die Keimdrüsen von C. elegans dienen als wertvolles Modell, um grundlegende biologische Prozesse wie Chromosomentrennung, DNA- Reparatur, Zellzykluskontrolle und programmierter Zelltod zu erkunden. Obwohl die Einzelzell- Molekulargenetik und Zellbiologie beeindruckend tiefe Einblicke in dieses System ermöglicht haben, sind die molekularen Maschinen, die aus Proteinkomplexen bestehen, in den Keimdrüsen nach wie vor wenig erforscht. Proteinkomplexe und Protein-Protein-Interaktionen spielen eine entscheidende Rolle bei der Erforschung dynamischer Prozesse der Zellteilung und DNA-Reparatur. Allerdings gestaltet sich die Stabilisierung und Untersuchung dieser Vorgänge im lebenden Wurm als herausfordernd. In den letzten zwei Jahrzehnten haben Forscher fortschrittliche bioingenieurwissenschaftliche Strategien entwickelt und verfeinert, um nicht-natürliche Aminosäuren (unAAs) in verschiedene Organismen, einschließlich C. elegans, einzuführen. Diese Aminosäuren können dem Wurm zugeführt und in zelluläre Proteine eingebaut werden. So lassen sich Proteine direkt im lebenden Wurm markieren. Durch UV-Bestrahlung können diese Aminosäuren aktiviert werden und sich mit Komplexpartner und direkten Interaktionspartnern verbinden. Diese Interaktion bleibt während der Probenvorbereitung erhalten und ermöglicht die Analyse von Proteinen in ihrer natürlichen Umgebung, sei es in spezifischen Zelltypen, Zellzyklusphasen oder subzellulären Regionen. In diesem Forschungsprojekt werden biochemische Methoden, wie Pull-Down-Assays, Proteinmarkierungen und Massenspektrometrie, mithilfe dieser innovativen Methode zur Stabilisierung von Proteinkomplexen und deren Interaktoren modifiziert und weiterentwickelt. Das Ziel ist die Untersuchung von Proteinkomplexen, die schwer zugänglich sind oder nur unter bestimmten zellulären Bedingungen auftreten. Besonderes Augenmerk gilt dem BTR-Komplex, da Störungen und Mutationen in diesem Komplex zum Bloom-Syndroms im Menschen führen können. Neue Erkenntnisse über die Dynamik der Komplexbildung des BTR-komplexes während der Meiose können zu innovativen Therapieansätzen und Verständnis der Krankheit führen. Dieser innovative Ansatz ermöglicht die systematische Generierung und Stabilisierung von Protein- Protein-Interaktionsnetzwerken in Keimzellen und darüber hinaus in einem lebenden Organismus. Zusätzlich wird künstliche Intelligenz in die Datenanalyse integriert, um neu gewonnene Erkenntnisse zu validieren und 3D-Modelle von Proteinkomplexen zu erstellen.

Forschungsstätte(n)
  • Institut für Molekulare Pathologie - IMP - 100%
Nationale Projektbeteiligte
  • Karl Mechtler, Institut für Molekulare Pathologie - IMP , Mentor:in

Research Output

  • 7 Zitationen
  • 5 Publikationen
Publikationen
  • 2024
    Titel Proteome-wide non-cleavable crosslink identification with MS Annika 3.0 reveals the structure of the C. elegans Box C/D complex
    DOI 10.1101/2024.09.03.610962
    Typ Preprint
    Autor Birklbauer M
    Seiten 2024.09.03.610962
    Link Publikation
  • 2024
    Titel Breaking Barriers in Crosslinking Mass Spectrometry: Enhanced Throughput and Sensitivity with the Orbitrap Astral Mass Analyzer
    DOI 10.1101/2024.12.21.629875
    Typ Preprint
    Autor Müller F
    Seiten 2024.12.21.629875
    Link Publikation
  • 2025
    Titel In vivo crosslinking and effective 2D enrichment for proteome wide interactome studies
    DOI 10.1038/s42004-025-01644-6
    Typ Journal Article
    Autor Bräuer P
    Journal Communications Chemistry
    Seiten 245
    Link Publikation
  • 2025
    Titel In vivo crosslinking and effective 2D enrichment for interactome studies of the nucleosome
    DOI 10.1101/2025.02.25.640081
    Typ Preprint
    Autor Bräuer P
    Seiten 2025.02.25.640081
    Link Publikation
  • 2025
    Titel Developing a new cleavable crosslinker reagent for in-cell crosslinking
    DOI 10.1038/s42004-025-01568-1
    Typ Journal Article
    Autor Müller F
    Journal Communications Chemistry
    Seiten 191
    Link Publikation

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